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線粒體復(fù)合體Ⅱ試劑盒(可見分光光度法)
點擊次數(shù):1535 更新時間:2019-10-14

貨號:YJ2445                                                    規(guī)格:25管/24樣

線粒體復(fù)合體Ⅱ試劑盒說明書

可見分光光度法

正式測定前務(wù)必取 2-3個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定

測定意義

線粒體復(fù)合體Ⅱ又稱琥珀酸-輔酶Q還原酶,廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞的線粒體中,催化琥珀酸氧化生成延胡索酸,同時輔基 FAD 還原為 FADH2,后者進一步還原氧化型輔酶Q生成還原型輔酶Q,是呼吸電子傳遞鏈的支路。

測定原理

復(fù)合體Ⅱ的催化產(chǎn)物還原型輔酶Q可進一步還原2,6-二氯吲哚酚,2,6-二氯吲哚酚在605nm 有特征吸收峰,通過檢測2,6-二氯吲哚酚的減少速率來計算該酶活性。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑組成和配制

試劑一:25mL×1 瓶,-20℃保存;

試劑二:5mL×1 瓶,-20℃保存;

試劑三:0.5 mL×1 支,-20℃保存;

試劑四:液體 25mL×1 瓶,4℃保存;

試劑五:粉劑×1 支,-20℃保存;

試劑六:粉劑×1 支,-20℃保存;

試劑七:液體 2.5mL×1 瓶,4℃保存;

樣本的前處理:

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離:

1、 準確稱取 0.1g 組織或收集 500 萬細菌或細胞,加入 1mL 試劑一和 10uL 試劑三,用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、 將勻漿 600g,4℃離心 5min。

3、 棄沉淀,將上清液移至另一離心管中,11000g,4℃離心 10min。

4、 上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白,可用于測定從線粒體泄漏的復(fù)合體Ⅱ(此步可選

做)。

5、 步驟④中的沉淀即為線粒體,加入200uL試劑二和2uL試劑三,超聲波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超聲3s,間隔10秒,重復(fù)30次),用于復(fù)合體Ⅱ酶活性測定。

測定步驟:

1、 分光光度計預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至605nm,蒸餾水調(diào)零。

2、 樣本測定

(1)工作液的配制:臨用前把試劑五和試劑六轉(zhuǎn)移到試劑四中混合溶解,置于37℃(哺乳

動物)或25℃(其它物種)孵育5min;用不完的試劑 4℃可保存一周;

(2)在1mL 玻璃比色皿中加入40μL樣本、100μL試劑七和800μL工作液,立即混勻,記錄 605nm處初始吸光值A(chǔ)1和2min后的吸光值A(chǔ)2,計算 ΔA=A1-A2。

復(fù)合體Ⅱ活力單位的計算

(1) 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義:每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個酶活力單位。

復(fù)合體Ⅱ活力(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(V樣×Cpr) ÷T

=559×ΔA÷Cpr

此法需要自行測定樣本蛋白質(zhì)濃度。

(2) 按樣本鮮重計算

單位的定義:每g組織每分鐘消耗1nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個酶活力單位。

復(fù)合體Ⅱ活力(nmol/min/g 鮮重)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(W×V樣÷V樣總)÷T=113×ΔA÷W

(3) 按細菌或細胞密度計算

單位的定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘消耗1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個酶活力單位。

復(fù)合體Ⅱ活力(nmol/min/104cell)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.226×ΔA

V 反總:反應(yīng)體系總體積,9.4×10-4 L;ε:2,6-二氯吲哚酚摩爾消光系數(shù),2.1×104L/mol /cm;

d:比色皿光徑,1cm;V 樣:加入樣本體積,0.04 mL;V 樣總:加入提取液體積,0.202 mL;

T:反應(yīng)時間,2 min;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g;500:細胞或細

菌總數(shù),500 萬。

線粒體復(fù)合體ⅱ試劑盒說明書(微量法)

線粒體復(fù)合體ⅳ試劑盒說明書

滬公網(wǎng)安備 31011802001676號

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